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BIOLOGÍA Y BIOQUÍMICA (Grupo 621)

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Una muestra de 100 ml de leche conteniendo dos

poblaciones bacterianas: (

I) Brucella abortus y (IILactobacillus lactis

, se

somete a un proceso de pasteurización alta (72 °C, 15 s), tras el cual

sobreviven 100 bacterias de la población (

I) y 30 bacterias de la población (II

). La

muestra de leche se deja a 25 °C durante 48 h.

Calcule el número de bacterias totales en 1 mL de leche tras las 48

horas de incubación

.

Supóngase que no hay fase de latencia y que no hay

interferencia entre las dos bacterias en su crecimiento. Considérese que la

fase estacionaria empieza a las 50 h de iniciado el cultivo. (

Puede indicar la respuesta como número entero o si utiliza notación científica utilice el formato 1,00E+00).

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Una muestra de 100 ml de leche conteniendo dos

poblaciones bacterianas: (

I) Brucella abortus y (II) Lactobacillus lactis

, se

somete a un proceso de pasteurización alta (72 °C, 15 s), tras el cual

sobreviven 100 bacterias de la población (

I) y 30 bacterias de la población (II

). La

muestra de leche se deja a 25 °C durante 48 h.

Calcule el número de bacterias de la población de Brucella abortus

 tras las 48 horas de incubación si el tiempo de

generación es de 80 min

. S

uponemos que no hay fase de latencia y que no hay

interferencia entre las dos bacterias en su crecimiento. Consideresé que la

fase estacionaria empieza a las 50 h de iniciado el cultivo. (

Puede indicar el numero entero o si se usa notación científica utilice el formato 1,00E+1).

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Una muestra de 100 ml de leche conteniendo dos

poblaciones bacterianas: (

I) Brucella abortus y (II) Lactobacillus lactis

, se

somete a un proceso de pasteurización alta (72 °C, 15 s), tras el cual sobreviven 100 bacterias de la población

I y 30 bacterias de la población II

. La muestra de

leche se deja a 25 °C durante 48 h.

Calcule

 el tiempo de generación de

Lactobacillus lactis

a 25 °C si después

de las 48 horas tenemos 10

16 bacterias (indiqueló en horas ajustado a dos decimales)

. Suponemos que no hay

fase de latencia y que no hay interferencia entre las dos bacterias en su

crecimiento. Consideresé que la fase estacionaria empieza a las 50 h de

iniciado el cultivo.

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Al ensayar

un enzima frente a un sustrato específico en presencia o ausencia de un

inhibidor, se obtienen los siguientes resultados:

[S] (mM)

V (µmol x min-1

)

[I]=0

V (µmol x min-1

)

[I]= 10

-4M

0.1

3.6

2.9

0.4

11.4

6.7

1

20

8.8

4

32

10.6

10

36.4

11.1

Determine

el tipo de inhibición.

Calcule

el valor de K

m para el sustrato

Calcule el valor de Ki

para el

inhibidor

Calcule

la [I] necesaria para inhibir un 50% la reacción,

cuando la concentración de sustrato es 0.2 mM.

Determine

la [S] a la que una concentración de inhibidor 0.4 mM da

lugar a una velocidad inicial de la reacción del 25% de la observada en

ausencia de inhibidor.

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Seleccione en el menú el reactivo más adecuado para realizar cada una de las funciones indicadas.

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Si una muestra de una proteína, que en una

SDS-PAGE (con solos SDS) da lugar a una sola banda de 120 kD, la sometemos a la

acción del 2-mercaptoetanol antes de la electroforesis con SDS dando entonces una sola

banda, pero de 40 kD ¿qué nos diría esto respecto a la estructura de la

proteína? Elija una opción de entre las siguientes:

0%
100%
0%
0%
0%
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Un

antibiótico polipeptídico de

Bacillus brevis

forma complejos con iones

metálicos, inhibiendo el transporte iónico a través de las membranas, y en

consecuencia mata a ciertas especies bacterianas. En el análisis de la

estructura se encuentra que:

a) La

hidrólisis ácida completa del péptido seguida del análisis de aminoácidos dio

cantidades equimoleculares de Leu, Pro, Orn, Val y Phe.

b) La

medida del PM dio 1100 D aproximadamente.

c) No

se hidrolizó con carboxipeptidasa.

d) El

tratamiento del péptido con fluorodinitrobenceno seguido de hidrólisis completa

y cromatografía no generó ningún derivado dinitrofenilado en el amino en alfa.

e) La

hidrólisis parcial del péptido seguida de separación cromatográfica y

secuenciación generó los siguientes péptidos:

Leu-Phe

Phe-Pro

Val-Orn-Leu

Orn-Leu

Phe-Pro-Val

Val-Orn

Pro-Val-Orn

¿Cuál

será la estructura primaria del péptido indicada en el código de una letra?

Consideresé

un PM medio de cada residuo de 110 D

0%
0%
0%
0%
0%
0%
100%
0%
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